"保姆级"教学:CRISPR/Cas9 sgRNA设计及实验流程介绍
                                发布时间:2025-10-22    浏览次数:250
                             
                            
                                
    “前面小编介绍了base editing sgRNA在线工具设计及实验流程,本篇小编将给大家带来CRISPR/Cas9 sgRNA设计的“保姆级"教程及实验操作流程介绍。”表1. sgRNA在线设计网站推荐及特点对比表:
    注:这些网站是目前sgRNA设计的常用网站,网站算法不同,各有优缺点。针对同一个基因的敲除,推荐大家多在几个网站进行sgRNA设计,对比结果,根据设计原则选择最优的设计。 
    小编比较喜欢在CHOPCHOP及DESKGEN(Synthego)在线网站上设计sgRNA,接下来以敲除B2M基因为例,分别使用这两个网站进行特异性sgRNA设计。 
    一. CHOPCHOP(https://chopchop.cbu.uib.no/) 
    1.按照下面的参数输入,点击Find Target Sites!查看设计的sgRNA结果。 
    2.结果查看,如下图3。结果输出界面由两部分组成,上面是sgRNA基因位置信息,下面是sgRNA结果信息,主要包括sgRNA排序(Rank),GC含量,预测引物二聚体(Self-complementarity评分),编辑效率(Efficiency),脱靶数量(MM0-3,分别为0-3个错配的脱靶位置数)等信息。然后结合下图评判信息,自己判断选择合适的sgRNA序列,一般按照网站给的排序选择前几条进行验证。 
    
        图3.输出结果界面(注,如图sgRNA红色代表大量脱靶,绿色代表无脱靶,sgRNA两侧的黑色三角表示sgRNA的方向性,绿色竖线代表潜在的ATG起始密码子)  
    点开具体的sgRNA序列会展示该sgRNA具体的信息,如图4,显示sgRNA的具体脱靶位置、编辑位点频率,验证用的PCR引物对等信息。最后提下,在输入参数信息界面有Options选项,点开后可根据自己需求选择,分别有全局参数,Cas9,primers等,可进行特定的要求选择,这步大家可尝试选择,不在此具体介绍。 
    
        二.DESKGEN(https://design.synthego.com)  
    1.打开https://design.synthego.com网址,如下图5,选择种属人Homo sapiens, 基因ID输入567(NCBI基因ID)或ENSG00000166710(Ensembl ID),选择B2M基因,点search; 
    2.结果界面分两部分如图6上图:Recommended Guides和All Guides,一般会看它推荐的序列。下面推荐的序列列举了四条sgRNA,分别有他推荐序列排名,sgRNA具体序列信息,minimal off targets等信息。如图6下图点开具体的一条序列可以看到设计的sgRNA具体结合B2M基因位置信息。设计出sgRNA的序列,可以构建质粒体外转录功能性sgRNA或直接公司下单合成sgRNA(公司会合成全长crRNA+tracrRNA可以直接使用的功能sgRNA序列)。 
接下来我简单介绍下CRISPR/Cas9敲除基因实验流程;
1.材料: 
•以human T cell使用CRISPR/Cas9敲除B2M基因为例(不激活/激活2-3天); 
•B2M sgRNA如使用DESKGEN设计(可自行合成sgRNA构建质粒体外转录或可直接公司合成CUGAAUCUUUGGAGUACCUG,含全长crRNA+tracrRNA); 
•Cas9酶(可使用Cas9酶表达质粒或体外合成Cas9 mRNA或公司购买mRNA或Cas9酶蛋白); 
•电转仪器Londa 4D(电转仪器也可选择别的公司); 
•电转试剂:SF Cell Line 4D-Nucleofector X kit; 
•电转程序:EH-115; 
2.步骤: 
1)收集激活或不激活的human T cell 使用无钙镁离子的DPBS重悬,200-300g离心清洗细胞2次; 
2)使用电转buffer 重悬细胞,100ul 电转体系官网推荐1-5e6细胞(需要自己优化细胞密度); 
3)100ul电转体系:75pmol sgRNA和3.0ug Cas9 质粒或mRNA或酶蛋白混匀加入上述待电转细胞中(注:如果使用Cas9酶蛋白,要提前混匀sgRNA和Cas9酶蛋白10-15min,形成RNP然后加入待电转细胞中,这步sgRNA:Cas9质粒或Cas9 mRNA或Cas9蛋白比例根据自己敲除基因进行优化,小编推荐sgRNA:Cas9(RNP)比例可尝试优化180pmol:60pmol或240pmol:120pmol); 
4)将混匀的sgRNA:Cas9质粒或Cas9mRNA或Cas9酶蛋白和细胞转入电转杯中再次混匀,避免气泡,放入电转仪,选择EH-115(使用原代T细胞优化程序,也可根据说明书指导自行进行电转参数优化)进行电转。 
5)电转后的细胞立即转入37℃预热的培养基中进行培养,2-4天后检测基因敲除效率。 
以上步骤供参考,具体实验细节可根据自己实验进行优化。 
文中内容来源于中检院官网,本文由环凯转载自“生物药研谈”公众号,版权归原作者(思进取的新药者)所有,仅供学习参考,如有侵权请联系删除!
                                
                                
                             
                                                        
                                
                                    
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